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首页 > 商务会议 > 医疗医学会议 > CRISPR/Cas9基因编辑技术培训班2019(9月杭州班) 更新时间:2019-08-27T17:39:17

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CRISPR/Cas9基因编辑技术培训班2019(9月杭州班)
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CRISPR/Cas9基因编辑技术培训班2019(9月杭州班) 已截止报名

会议时间:2019-09-25 09:00至 2019-09-26 17:00结束

会议地点: 杭州  全季酒店(杭州文三路店)  浙江省杭州市西湖区文三路121号 周边酒店预订

会议规模:50人

主办单位: 北京微旋基因技术有限公司

发票类型:增值税普通发票
领取方式:现场领取 
发票内容: 会议费 会务费 会议服务费 会议注册费 注册费 培训费 
参会凭证:现场凭电话姓名参会

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        会议通知

        会议内容 主办方介绍


        CRISPR/Cas9基因编辑技术培训班2019(9月杭州班)

        CRISPR/Cas9基因编辑技术培训班2019(9月杭州班)宣传图

        CRISPR/Cas9基因编辑技术培训班

        邀请函

        尊敬的         :您好!

        CRISPR是生物科学领域的颠覆性技术,使用高效、迅速且简单,在生物医学研究领域引起一场巨变,并因此席卷全球实验室。研究人员利用它改造人类基因以消除疾病,创造生命力更加顽强的植物,并且消灭病原体。《Science》2017年度突破、《Nature》2017年度人物均授予了CRISPR相关技术的突破,CRISPR技术再一次成为生命科学的焦点。

        随着近几年的发展,研究者开发出越来越多基于CRISPR的新型基因编辑技术,例如CRISPRa/i,基因定位,表观遗传修饰,单碱基基因编辑系统(BE2,BE3,ABE等),CRISPR/C2c2基因突变检测系统等。CRISPR/Cas9系统的应用更加便捷、高效,也更广泛,目前该技术成功应用于人类细胞、斑马鱼、小鼠以及细菌等基因组精确修饰,成为科研人员的强大工具,基于CRISPR临床实验已经取得初步成功。

        为了让更多的科研人员及时全面的掌握CRISPR最新技术,并应用的相应的领域研究中。特于2019年9月25日至26日在全季酒店(杭州文三路店)举办CRISPR/Cas9基因靶向修饰技术培训班。免费获得一份CRISPR/Cas9敲除质粒载体(可以用于哺乳动物、植物、真菌、细菌、斑马鱼、线虫等,共60种)。免费赠送sgRNA离线设计软件(有基因组DNA序列即可设计!学员需自带电脑)。


        举办时间:

        2019年9月25日至26日

        举办地点

        全季酒店(浙江省杭州市西湖区文三路121号全季酒店杭州文三路店)

        参加对象

        从事医学、生命科学、农学等领域科研工作者和高校教师及研究生。

        授课方式

        理论讲授和实际演练紧密结合。

        承办单位:                                

        北京微旋基因技术有限公司

        CRISPR 质 粒 清 单

        Plant

        #50588

        pHSN401

        CRISPR/Cas based plant genome editing and gene regulation; expresses 3×FLAG-NLS-zCas9-NLS, gRNA scaffold for insertion of target sequence (AtU6-26 promoter), Hyg resistance

        #63142

        pRGEB32

        (Empty Backbone) Express sgRNA/PTG with rice snoRNA U3 promoter and Cas9 with rice ubiquitin promoter for Agrobacterium-mediated transformation.

        #51295

        pRGEB31

        (Empty Backbone) Binary vector derived from pRGE31. Deliver sgRNA and Cas9 into plant. by agrobacterium mediated transformation.

        Insect

        #49330

        pAc-sgRNA-Cas9

        Expresses sgRNA and Cas9-Puro in Drosophila S2 cells

        C.elegans

        #47549

        pDD162

        Cas9 + sgRNA plasmid that can be modified to cleave any Cas9 target site in the C. elegans genome.

        Yeast

        #43804

        p415

        Human Optimized S. pyogenes Cas9

        Bateria

        #42875

        pCRISPR

        A crRNA expression plasmid for targeting a specific sequence

        #61737

        pCRISPomyces-2

        Streptomyces expression of codon-optimized Cas9 and custom gRNA

        Zebrafish

        #47929

        pCS2-nCas9n

        expression of an optimized Cas9 for genome-editing in zebrafish

        Mammalian

        #52970

        FokI-dCas9

        Expresses Fok1 nuclease domain fused to catalytically inactive Cas9 DNA-binding domain in mammalian cells

        #61591

        PX601

        A single vector AAV-Cas9 system containing Cas9 from Staphylococcus aureus (SaCas9) and its sgRNA.

        #42230

        PX330

        A human codon-optimized SpCas9 and chimeric guide RNA expression plasmid.

        #48138

        PX458

        Cas9 from S. pyogenes with 2A-EGFP, and cloning backbone for sgRNA

        #48139

        PX459

        Cas9 from S. pyogenes with 2A-Puro, and cloning backbone for sgRNA (V2.0)

        #48140

        PX461

        Cas9n (D10A nickase mutant) from S. pyogenes with 2A-EGFP, and cloning backbone for sgRNA

        #48141

        PX462

        Cas9n (D10A nickase mutant) from S. pyogenes with 2A-Puro, and cloning backbone for sgRNA

        #50661

        pCW-Cas9

        Inducible lentiviral expression of SpCas9

        #52963

        LentiGuide-puro-Vector

        Expresses S. pyogenes CRISPR chimeric RNA element with customizable sgRNA from U6 promoter and puromycin resistance from EF-1a promoter. Lentiviral backbone.

        #52962

        lentiCas9-Blast

        Expresses human codon-optimized S. pyogenes Cas9 protein and blasticidin resistance from EFS promoter. 3rd generation lentiviral backbone.

        #69982

        pY010

         Expresses humanized AsCpf1

        #19319

        pLJM1-EGFP

        (Empty Backbone) 3rd gen lentiviral vector for EGFP fusion; PGK driven puromycin

        #12260

        psPAX2 

        Lentivirus package plasmids

        #61427

        lenti sgRNA(MS2)_zeo

        (Empty Backbone) 3rd generation lenti sgRNA cloning backbone with MS2 loops at tetraloop and stemloop 2 and EF1a-zeo resistance marker. Contains BsmBI sites for insertion of spacer sequences.

        #61426

        lenti MS2-P65-HSF1_Hygro

        lenti vector encoding the MS2-P65-HSF1 activator helper complex with a 2A Hygro resistance marker (EF1a-MS2-p65-HSF1-2A-Hygro-WPRE)

        #61425

        lenti dCAS-VP64_Blast

        3rd generation lenti vector encoding dCAS9-VP64 with 2A Blast resistance marker (EF1a-NLS-dCas9(N863)-VP64-2A-Blast-WPRE)

        #71814

        eSpCas9(1.1)

        Expresses high specificity SpCas9. Px330-like plasmid.

        #47327

        pET-28b-Cas9-His

        For in vitro expression and purification of Cas9 protein

        #62934

        pET-NLS-Cas9-6xHis

        Expression of NLS-Cas9-6xHis in bacterial cells

        86840

        pJH373

        mamalian expression of AcrIIA2

        84750

        Lenti-AsCpf1-Blast

        Expresses human codon-optimized AsCpf1 protein and blasticidin resistance from EFS promoter. Lentiviral backbone.

        84752

        Lenti_gRNA-Puro

        (Empty Backbone) Expresses Cpf1 customizable sgRNA from U6 promoter and puromycin resistance from EF-1a promoter

        79145

        pCAG-eCas9-GFP-U6-gRNA

        All-in-one CRISPR/Cas9 vector with high-fidelity eSpCas9 expression in human pluripotent stem cells

        84745

        pY30

        Expresses huAsCpf1-P2A-puro and crRNA guide

        84743

        pY094

        Expresses huAsCpf1-T2A-GFP and crRNA guide

        84741

        pY026

        Expresses huAsCpf1 and crRNA guide

        79152

        pC003

        LshC2c2 locus in pACYC184 with BsaI sites for spacer cloning

        79150

        pC001

        Expresses human codon-optimized LshC2c2 for purification in E. coli

        64324

        pU6-(BbsI)_CBh-Cas9-T2A-mCherry

        Expression vector for sgRNAs cloned into the BbsI sites and for expression of Cas9 linked to mCherry via a T2A peptide

        64222

        pU6-(BbsI)_CBh-Cas9-T2A-mcherry-P2A-Ad4E4orf6

        Expression vector for sgRNA and for Expression of Cas9 linked via T2A to mCherry linked to the Ad4 E4orf6 gene via P2A

        64218

        pU6-(BbsI)_CBh-Cas9-T2A-BFP-P2A-Ad4E1B

        Expression vector for sgRNA and for Expression of Cas9 linked to BFP via T2A linked to Ad4 E1B via P2A

        64323

        pU6-(BbsI)_CBh-Cas9-T2A-BFP

        Expression vector for sgRNAs cloned into the BbsI sites and for expression of Cas9 linked to BFP via a T2A peptide

        51023

        pSLQ1658-dCas9-EGFP

        Template for NLS-dCas9-NLS-EGFP fusion protein for CRISPR imaging (the recipient vector can be TetON 3G promoter system)

        64108

        pHAGE-TO-dCas9-3XmCherry

        Expression of Sp dCas9-3XmCherry in mammalian cells

        查看更多

        北京微旋基因技术有限公司 北京微旋基因技术有限公司

        公司主营业务为通过基因检测、质谱检测、生物信息分析等手段,为医疗机构、科研机构、企事业单位等提供基因组学类的检测和研究服务。微旋基因秉承“基因科技造福人类”的愿景,以推动生命科学研究进展、生命大数据应用和提高全球医疗健康水平为出发点,基于基因领域研究成果及精准检测技术在民生健康方面的应用,致力于加速科技创新,减少出生缺陷,加强肿瘤防控,抑制重大疾病对人类的危害,实现精准治愈感染,全面助力精准医学。 公司主要服务于国内外的科研院校、研究所、独立医学检验实验室、制药公司等机构, 以及国内外的各级医院、体检机构等医疗卫生机构、公司客户和大众客户。目前,公司业务已经覆盖了上百家医疗机构,其中三甲医院30多家一直与我们保持着量好的业务和科研合作,与各个地区合作的海内外医疗和科研机构超过100家。 公司致力于基因技术的临床应用,细胞治疗和药物研发,汇聚了来自国内外医学、分子生物学、基因组学、生物信息学、计算机科学等各个领域的专业技术人才。

        会议日程

        (最终日程以会议现场为准)


        课程安排:

        日期

        时间

        培训内容

        授课老师

        9月24日

        15:00-19:00

        培训报到

        刘刚

        博士

        9月25日

        9:00-11:30

        理论讲解:

        一、基因编辑技术简介(三代基因编辑工具)

        1. ZFN 2.TALEN 3.CRISPR

        二、CRISPR/Cas9基因编辑技术原理

        1. CRISPR/Cas9发现历史

        2. CRISPR/Cas9作用机制解析

        3. CRISPR/Cas9系统改造策略

        13:00-17:00

        理论讲解

        一、sgRNA在线设计构建实战演练(1.靶基因序列查找2.sgRNA在线设计合成)

        二、CRISPR/Cas9转染策略:

        1.生物转染(慢病毒、腺相关病毒等)

        2.物理转染 (电转核酸/RNP、显微注射、基因枪)

        3.化学转染 (脂质体、阳离子聚合物)

        三、CRISPR/Cas9 sgRNA效率检测,脱靶检测及解决策略

        1、高保真Cas9(espCas9、Hifi-Cas9、Cluster1-Cas9)

        9月26日

        9:00-11:30

        理论讲解:

        一、CRISPR技术应用解析

        1.基因敲除(单基因敲除、多基因敲除、大片段删除、多靶点sgRNA载体构建策略)

        2.基因敲入实战演练(gRNA选择、同源臂设计、导入,长片段导入策略/提高基因敲入效率策略,PITCh、HITI)

        3.CRISPR在转录调控中的应用(转录激活、转录抑制系统)

        4.CRISPR靶基因标记定位

        二、CRISPR案例解析

        1.基因敲除在小鼠模型构建、植物、细胞、细菌、真菌等中的应用案例解析

        2.基于CRISPR的全基因组基因敲除高通量筛选策略

        3.基于CRISPR的全基因组转录激活/抑制高通量筛选策略

        三、CRISPR/Cas9与基因沉默技术(siRNA、shRNA)系统比较。

        13:00-17:00

        理论讲解:

        一、单碱基基因编辑技术简介及在基因治疗中的应用

        1.HF2-BE2 2.BE3系统 3.ABE系统4.单碱基基因编辑脱靶克服。

        二、基因CRISPR的基因检测系统

        1、CRISPR-Cpf1系统介绍(DETECTR)

        2、CRISPR-C2c2系统介绍(SHERLOCK)

        三、CRISPR/Cas9系统在肿瘤和遗传病治疗中应用解析

        1、CRISPR结合免疫检查点抑制剂治疗肿瘤

        2、单基因遗传病治疗(DMD、先天性黑朦、地中海贫血等)

        3、CRISPR治疗HIV-基因编辑婴儿解析

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        会议嘉宾

        (最终出席嘉宾以会议现场为准)


        刘刚博士

        2008年博士毕业于中国科学院上海生命科学研究院,从事肿瘤干细胞,细胞衰老,肿瘤转移等细胞作用网络和通路的研究,并作为骨干研究人员参加了973计划项目、国家自然科学基金重点项目、在香港中文大学做为作为Postdoc和Research fellow,从事研究工作。先后Nature Genetics,cell research、PLOS one等期刊发表论文十余篇。

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        参会指南

        会议门票 场馆介绍


        收费标准

        注册费: 2800元/人,2019年9月10号之前汇款报名可以优惠至:2600元/人。包括学费、资料费、试剂耗材费、其他材料费;免费提供工作午餐,可协助安排住宿,住宿费用自理。

        推荐住宿地点:全季酒店,299元/标间,319元/大床。

        查看更多

        温馨提示
        酒店与住宿: 为防止极端情况下活动延期或取消,建议“异地客户”与大发快3官方—大发快三走势客服确认参会信息后,再安排出行与住宿。
        退款规则: 活动各项资源需提前采购,购票后不支持退款,可以换人参加。

        还有若干场即将举行的 CRISPR大会

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        部分参会单位

        主办方没有公开参会单位

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